【分享】为什么同样是MS阳性，有些鸡群平稳，有些损失明显？（第2期）

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生产中经常遇到这样的情况：两批商品蛋鸡都检出滑液囊支原体（MS）。一批鸡生产表现基本稳定；另一批却陆续出现呼吸道异常、跛行、死淘增加、产蛋下降或蛋壳异常。

MS阳性只说明鸡群存在感染证据，不能直接预测损失程度。 感染能否转化为明显损失，还要看病原特性、鸡群状态、外部放大因素，以及是否形成靶器官损伤。

一、同样阳性，面对的可能不是同一种病原风险
不同MS分离株的致病性和组织嗜性并不完全相同。

中国研究人员对2013—2014年从16个省份地方鸡中获得的110株MS进行了分析。研究发现，不同分离株的致病性存在明显差异；依据vlhA基因部分序列得到的分型，与致病性之间也没有密切对应关系[1]。

这项研究使用的是地方鸡来源分离株和试验致病性评价，不能直接换算为商品蛋鸡损失。但它说明：同为MS阳性，病原风险可能不同；单一基因型也不足以预测损失。

一项国外蛋鸡研究提供了更直接的证据。研究人员从同一蛋鸡场分离到两株MS。攻毒后两株都能在气管检出，但只有一株进入输卵管，并引起蛋壳顶端异常；另一株没有产生相同结果[2]。

这提示，病原能否进入特定组织并造成损伤，比“是否阳性”更接近最终结果。生产上还要结合病变部位和生产曲线判断风险。

二、感染发生时，鸡群还有多少缓冲空间？
即使病原相近，不同鸡群的反应也可能不同。鸡群体重、均匀度和采食量稳定，原有呼吸道负担较轻，感染后可能仍有一定缓冲空间。如果感染与转群、免疫应激、开产爬坡或既有健康问题重叠，生产指标则更容易偏离。

这是依据蛋鸡生产规律作出的风险判断，并不存在适用于所有鸡场的固定“危险日龄”。重点是：感染发生时，鸡群正在承担什么生产任务，原有状态是否稳定。

现场应回看阳转前后的体重、均匀度、采食量、基础死淘、呼吸道情况和产蛋曲线。若感染前已经不稳定，就不能把后续损失全部归因于MS。

三、哪些因素会把原本有限的损伤放大？
MS在生产现场往往不是单独作用。

国内研究利用SPF鸡比较了传染性支气管炎病毒（IBV）、MS和鸭疫里默氏杆菌（RA）的不同感染组合。研究结果显示，不同组合造成的气囊病变和输卵管栓塞结果并不相同。部分感染组合中，MS在气管内维持较高载量，但输卵管栓塞情况仍存在差异[3]。

这提示，MS检出量不能单独解释组织损伤，病原组合也很重要。

国外人工感染试验也观察到，先前存在IBV感染时，气溶胶感染MS后关节病变发生机会和严重程度增加[4]。

这些人工感染研究只能说明混合感染可能放大损伤，不能据此认定现场一定存在IBV或RA，也不能换算商品蛋鸡的发生率和损失比例。

通风不足、氨气和粉尘偏高、温度波动等，也可能增加呼吸道负担。因此，损失明显时还应检查环境和近期应激，并结合病变及实验室结果排查其他病原。

四、真正的分水岭：有没有形成靶器官损伤
MS感染是否造成生产损失，很大程度上取决于病原停留在哪里，以及是否形成持续性组织损伤。

2025年，中国团队使用SPF白来航产蛋鸡建立人工感染模型。研究发现，湖北MS分离株不仅能在气管检出，也能在输卵管膨大部和子宫部定植，并伴随气囊病变、输卵管损伤、产蛋量下降、蛋壳强度降低和蛋壳顶端异常[5]。

这说明中国分离株在试验条件下可以由呼吸道定植发展为输卵管损伤和生产变化。但单一菌株人工攻毒不能代表所有自然感染鸡群。

国外现场调查和攻毒试验也支持MS与蛋壳顶端异常之间的关系[6]。 现场可以把靶器官与生产指标对应起来：

• 累及气囊，可能增加呼吸道负担和继发感染风险；
• 累及关节或腱鞘，可能影响行走、采食和淘汰率；
• 累及输卵管，可能影响产蛋表现、蛋壳强度和商品蛋质量。
  

因此，真正需要警惕的不是“阳性”，而是靶器官损伤及持续的生产偏离。

生产上应把剖检病变、病原检测和生产数据放在一起，并与历史批次、品种标准曲线和同期其他栋舍比较，不能套用其他研究的损失比例。

五、现场四问法：怎样判断阳性鸡群的损失风险？
拿到MS阳性结果后，可以先问四个问题。

第一问：异常或持续阳转发生在什么阶段？ 是否与转群、免疫、开产爬坡或采食波动重叠？

第二问：鸡群原有状态是否稳定？ 比较体重、均匀度、采食、死淘、呼吸道情况和产蛋曲线。

第三问：有没有外部放大因素？ 检查环境、近期应激及其他病原证据，不能仅凭症状认定混合感染。

第四问：是否已出现靶器官损伤和持续生产变化？ 同步观察气囊、关节、腱鞘和输卵管病变，以及采食、跛行、死淘、产蛋率和异常蛋比例。

据此可以进行定性分层：

• 损失风险相对较低：仅有感染证据，生产指标稳定，未见持续性靶器官异常；
• 损失风险升高：感染与生产节点、环境波动或其他病原重叠，部分生产指标开始偏离；
• 需要重点关注：已经出现气囊、关节、腱鞘或输卵管损伤，并伴随采食、死淘、产蛋或蛋品质持续异常。
  

这不是诊断标准或固定评分，只用于确定排查和管理的优先级。

本期要点

• MS阳性只能证明存在感染证据，不能直接代表损失程度。
• 不同MS分离株的致病性和组织嗜性可能不同，单一基因型不足以预测生产结果。
• 鸡群基础状态、生产节点、环境压力和其他病原可能共同放大损伤。
• 是否形成气囊、关节、腱鞘或输卵管等靶器官损伤，是感染能否转化为明显损失的重要分水岭。
• 现场应结合“四问法”和连续生产数据，对阳性鸡群进行定性风险分层。
  

一句话核心结论：

阳性只是感染证据；风险因素是否叠加、是否形成靶器官损伤和持续生产偏离，才更接近鸡群最终的损失程度。

当我们知道阳性鸡群为什么会出现不同结果后，还需要继续追问：雏鸡最初的MS风险究竟从哪里来？

参考文献
[1] SUN S K, LIN X, LIU J M, et al. Phylogenetic and pathogenic analysis of Mycoplasma synoviae isolated from native chicken breeds in China[J]. Poultry Science, 2017, 96(7): 2057-2063.
[2] CATANIA S, GOBBO F, BILATO D, et al. Two strains of Mycoplasma synoviae from chicken flocks on the same layer farm differ in their ability to produce eggshell apex abnormality[J]. Veterinary Microbiology, 2016, 193: 60-66.
[3] 王晨燕, 侯博, 等. 传染性支气管炎病毒、滑液囊支原体与鸭疫里默氏杆菌混合感染致SPF鸡输卵管栓塞模型的建立[J]. 畜牧兽医学报, 2026(7).
[4] LANDMAN W J M, FEBERWEE A. Aerosol-induced Mycoplasma synoviae arthritis: the synergistic effect of infectious bronchitis virus infection[J]. Avian Pathology, 2004, 33(6): 591-598.
[5] WANG C, WANG Q, LI Y, et al. Plasma metabolomics of Mycoplasma synoviae infection in SPF White Leghorn hens by liquid chromatography-tandem mass spectrometry[J]. Veterinary Research, 2025, 56: 65.
[6] FEBERWEE A, DE WIT J J, LANDMAN W J M. Induction of eggshell apex abnormalities by Mycoplasma synoviae: field and experimental studies[J]. Avian Pathology, 2009, 38(1): 77-85.

来源：家禽小马1993

黄炎坤

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