【分享】MS基因型、血清型、PCR和抗体,哪个更重要?(第8期)
“PCR阳性,是不是说明鸡群发病了?”“MS抗体很高,是不是说明保护很好?”
“检测出某个基因型,能不能判断毒力和疫苗效果?”
这些问题看似都与检测有关,实际上对应的是不同的生产目的。
PCR主要寻找当前的病原证据,抗体反映感染或免疫背景,基因分型用于比较毒株和追踪来源。哪个更重要,取决于鸡场想解决什么问题。
检测的目的不是得到一张阳性或阴性报告,而是为MS控制提供依据。
一、PCR和抗体回答的是不同问题
PCR主要寻找当前的病原证据
PCR阳性,说明在本次送检样品中检出了MS核酸,为判断鸡群当前感染状态提供了重要证据。
但PCR阳性不能直接证明:
[*]检出的全部是具有感染能力的活菌;
[*]MS就是当前发病或产蛋下降的唯一原因;
[*]阳性比例越高,病情一定越严重;
[*]用药或免疫后仍然阳性,就代表方案无效。
MS可以在呼吸道长期定植。部分鸡群PCR阳性,却没有明显症状和生产损失;当MS与IBV、MG、大肠杆菌或不良环境共同作用时,临床问题又可能明显加重。
因此:
PCR阳性说明检出了MS核酸,不等于鸡群已经发生由MS主导的临床疾病。
PCR阴性同样不代表绝对没有感染。感染比例低、病原间歇排出、抽样数量不足、采样部位不合适以及近期用药,都可能造成漏检。
所以,判断PCR结果时,至少要了解采样时间、采样部位、抽样数量和近期用药情况。
抗体主要反映感染或免疫背景
MS抗体说明鸡群对MS抗原产生了免疫应答。抗原既可能来自自然感染,也可能来自疫苗免疫。
抗体检测更适合用于:
[*]判断鸡群是否接触过MS抗原;
[*]观察是否发生群体血清学阳转;
[*]评价免疫后是否产生抗体应答;
[*]比较不同鸡舍或批次的抗体水平和整齐度。
抗体高不等于鸡群没有感染,也不等于已经获得完全保护。免疫攻毒研究发现,较强的免疫应答可以降低MS DNA拷贝数和组织病变,但不能完全阻止MS定植。
目前也没有能够跨鸡种、疫苗和检测试剂盒通用的MS抗体保护阈值。
所以:
抗体的价值主要是反映鸡群免疫背景,并辅助评价减损能力,不能单独用于判断当前是否感染或是否需要采取控制措施。
二、血清型和基因型不能混为一谈
生产中有时会问:“这个鸡场的MS是什么血清型?”
早期禽支原体血清学分类曾将MS列为S型。这主要是当时用于区分不同禽支原体的一种历史命名,并不等同于IBV等疾病中可以用于指导疫苗匹配的血清型概念。
因此,“MS属于S型”不能直接回答疫苗匹配和交叉保护问题。
目前,MS毒株比较更多采用基因分型。根据目的不同,可以分析特定基因,也可以采用多位点序列分型等方法。
基因分型主要用于:
[*]判断不同鸡舍或批次的毒株是否接近;
[*]追踪鸡场之间可能存在的传播联系;
[*]判断同一毒株是否在场内长期存在;
[*]在使用活苗时辅助区分疫苗株和野毒株。
但基因型不能直接等同于毒力。
研究发现,同一蛋鸡场分离出的两株MS在诱发蛋壳顶端异常方面可以存在差异;不同基因型的MS也可能造成相似的蛋壳异常和产蛋损失。
这说明毒株的临床表现还会受到感染剂量、感染部位、宿主状态、混合感染和饲养环境等因素影响。
基因分型主要回答“毒株是否相近、可能从哪里来”,不能单独判断病情有多严重。
对于日常监测,基因分型不是必检项目;只有在追踪传播、排查反复感染或区分活疫苗株与野毒株时,它才具有更直接的控制价值。
三、PCR和抗体结果不一致,怎样处理?
生产现场常见以下四种组合:
检测结果优先考虑控制建议
PCR阳性、抗体阴性感染早期,抗体尚未形成;也可能存在个体应答差异间隔复采PCR和血清,观察是否持续检出或发生群体阳转
PCR阳性、抗体阳性当前或近期感染;使用活苗时也可能受到疫苗株影响核对免疫史,结合症状、病变和生产损失判断;必要时区分疫苗株与野毒株
PCR阴性、抗体阳性既往感染、疫苗免疫或当前排菌水平较低生产稳定时观察趋势;存在临床问题时扩大抽样并排查其他病原
PCR阴性、抗体阴性尚未感染,也可能处于感染过早、低水平感染或抽样漏检阶段根据同场阳性鸡群、日龄和历史感染窗口决定是否复检
无论是哪一种组合,都不能脱离以下背景单独解释:
[*]鸡群日龄和生产阶段;
[*]活苗、灭活苗免疫史;
[*]近期用药情况;
[*]同场其他批次的MS状态;
[*]临床症状、病变和生产指标变化。
尤其是使用MS活苗的鸡群,常规PCR阳性可能来自疫苗株,也可能来自野毒株。如果必须区分两者,就需要鉴别PCR或基因分型,而不能只看常规PCR结果。
四、检测结果怎样服务于MS控制?
不同生产问题,应选择不同证据。
1. 尚未发病:重点寻找感染窗口
对于生产稳定的鸡群,检测目标不是证明鸡群“绝对阴性”,而是通过连续监测寻找:
[*]PCR什么时候开始持续检出;
[*]阳性比例是否逐渐升高;
[*]抗体什么时候发生群体阳转;
[*]阳转是否与转群、混群或其他批次接触同步。
找到本场首次明显阳转窗口,才能把生物安全、免疫或其他预防措施安排在风险明显升高之前。
2. 已经发病:判断MS是否参与损伤
当鸡群出现呼吸道症状、关节异常、蛋壳质量下降或产蛋波动时,不能只看MS PCR结果。
还应判断:
[*]MS是否在相应病变部位检出;
[*]是否存在IBV、MG、大肠杆菌等混合感染;
[*]病变和生产损失是否与检测结果相吻合;
[*]温度、通风、转群和免疫应激是否参与发病。
只有把病原、病变和生产损失联系起来,才能判断MS是主要因素、协同因素,还是背景感染。
3. 评价免疫:不能只看抗体高低
抗体升高说明鸡群产生了免疫应答,但方案是否有效,最终还要看:
[*]发病和病变是否减少;
[*]PCR阳性比例或检出水平是否下降;
[*]产蛋率和蛋壳质量是否更稳定;
[*]是否减少反复用药。
完整的方案评价应按照第6期介绍的基线比较、三类结果和持续趋势进行。
4. 反复阳转:必要时开展分型
如果不同鸡舍或连续批次反复阳转,需要判断是原有毒株持续存在,还是外部重新引入,此时基因分型才可能成为关键证据。
分型结果还应与人员、车辆、器具、鸡群流向和场区布局结合,才能转化为具体的生物安全措施。
本期结论
PCR、抗体和基因分型没有绝对的优先顺序。
[*]PCR主要寻找当前的病原核酸证据,但阳性不等于发病,阴性也不能完全排除感染。
[*]抗体主要反映感染或免疫背景,高抗体可能具有减损价值,但不能证明已经阻断感染。
[*]S型属于早期历史分类,不能直接用于当前的疫苗匹配。
[*]基因分型主要用于毒株比较、传播溯源和疫苗株鉴别,不能仅凭基因型判断毒力。
[*]最终控制决策必须结合免疫史、用药史、连续趋势、临床病变和生产表现。
可以把本期内容归纳为一句话:
生产问题决定检测方法,连续趋势帮助解释结果,病变和生产损失决定控制行动。
至此,这个系列从MS风险识别、感染来源、预防价值和工具选择,逐步讨论到效果评价、发病控制和检测判读。最终目的不是建立一个适用于所有鸡场的固定程序,而是根据本场风险、感染阶段和生产目标作出更合理的选择。
参考文献
WORLD ORGANISATION FOR ANIMAL HEALTH. Avian mycoplasmosis (Mycoplasma gallisepticum, M. synoviae). Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals, 2021.
FEBERWEE A, MEKKES D R, DE WIT J J, et al. Comparison of culture, PCR, and different serologic tests for detection of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae infections. Avian Diseases, 2005, 49(2): 260-268.
TIMMS L M. Mycoplasma synoviae: a review. Veterinary Bulletin, 1978, 48: 187-198.
EL-GAZZAR M, GHANEM M, MCELROY A, et al. Development of multilocus sequence typing for Mycoplasma synoviae. Avian Diseases, 2017, 61(1): 25-32.
DIJKMAN R, FEBERWEE A, LANDMAN W J M. Development, validation and field evaluation of a quantitative real-time PCR able to differentiate between field Mycoplasma synoviae and the MS-H live vaccine strain. Avian Pathology, 2017, 46(4): 403-415.
MORONATO M L, CECCHINATO M, FACCHETTI G, et al. Application of different laboratory techniques to monitor the behaviour of a Mycoplasma synoviae vaccine (MS-H) in broiler breeders. BMC Veterinary Research, 2018, 14: 357.
CATANIA S, GOBBO F, BILATO D, et al. Two strains of Mycoplasma synoviae from chicken flocks on the same layer farm differ in their ability to produce eggshell apex abnormality. Veterinary Microbiology, 2016, 193: 60-66.
HAN S Z, WANG Y, CHANG W C, et al. Evaluation of the protective efficacy of six major immunogenic proteins of Mycoplasma synoviae. Frontiers in Veterinary Science, 2024, 10: 1334638.
来源:家禽小马1993
页:
[1]